

Оптимизация непрерывного двухстадийного производства биогитана из сточных вод кондитерской промышленности
https://doi.org/10.15518/isjaee.2025.06.029-062
Аннотация
Двухстадийная анаэробная ферментация представляет собой перспективный метод получения смеси Н2 и СН4 (биогитана) из различных органических отходов. Однако для масштабирования этого процесса требуется оптимизация условий, чтобы максимизировать удельный выход и скорость образования газообразных продуктов, а также обеспечить оптимальное соотношение Н2 и СН4 в биогитане. В данной работе варьировали гидравлическое время удержания (HRT) и нагрузку по органическому веществу (OLR) в мезофильном кислотогенном (RH) и термофильном метаногенном (R) реакторах с целью оптимизации непрерывного двухстадийного производства биогитана из сточных вод кондитерской промышленности. Удельный выход Н2 (87,8 ± 20,3 мл/г ХПК) и скорость образования Н2 (2352 ± 376 мл/(л∙сут)) были максимальными при OLR в RH, равном 26,8 г ХПК/(л·сут). Удельный выход СН4 (286,3 ± 29,1 мл/г ХПК) был максимален при HRT и OLR в R, равным 2 сут и 2,05 г ХПК/(л·сут), соответственно, а скорость образования СН4 (964,6 ± 162 мл/(л·сут)) была максимальна при HRT и OLR в R, равным 2 сут и 4,6 г ХПК/(л·сут), соответственно. Оптимальный состав биогитана (10% Н2 , 50,4% СН4 , 39,6% СО2 ) был получен, когда RH функционировал при OLR, равным 12,8 г ХПК/(л·сут), а R при HRT и OLR, равным 3 сут и 1,37 г ХПК/(л·сут), соответственно. В оптимальных режимах работы в Н2-продуцирующем микробном сообществе RH доминировали Caproiciproducens и Clostridium sensu stricto 12, а в R – синтрофные бактерии Cloacimonadaceae W5, Lentimicrobium, Anaerolinea, и гидрогенотрофные метаногены Methanothermobacter. Полученные результаты способствуют дальнейшему совершенствованию двухстадийной анаэробной ферментации для производства биогитана из концентрированных сточных вод.
Об авторах
Э. Р. МихееваРоссия
Михеева Эльза Равилевна - научный сотрудник лаборатории ресурсосберегающих биотехнологий, кандидат биологических наук.
Образование: Нижегородский государственный технический университет им. Р. Е. Алексеева (НГТУ), 2009 г., химическая технология и биотехнология.
Область научных интересов: биогаз; метановодородный газ; осадки сточных вод; анаэробная ферментация; биотехнология; метаногенные бактерии; отходы пищевой промышленности; аппарат вихревого слоя; микроскопия; клетки крови; квантовые точки; нейтрофильные гранулоциты.
Публикации: более 50
Индекс Хирша (РИНЦ): 7
Researcher ID: L-8818-2016
РИНЦ: 607913
603022, г. Нижний Новгород, проспект Гагарина 23, корпус 5
С. В. Шехурдина
Россия
Шехурдина Светлана Витальевна - младший научный сотрудник лаборатории микробиологии антропогенных мест обитания, аспирант.
Образование: Московский Государственный Университет имени М. В. Ломоносова (МГУ), 2023 г., микробиолог.
Область научных интересов: анаэробное сбраживание; прямой межвидовой перенос электронов; анаэробные микроорганизмы; метаногенные сообщества; метаногенез; биогаз;
анаэробная переработка органических отходов.
Публикации: более 15
Индекс Хирша: Scopus – 7; WoS – 7
Scopus Author ID: 57564192200
119071, г. Москва, Ленинский проспект, д. 33, стр. 2
И. В. Катраева
Россия
Катраева Инна Валентиновна - кандидат технических наук, доцент кафедры водоснабжения, водоотведения, инженерной экологии и химии; научный сотрудник лаборатории ресурсосберегающих биотехнологий .
Образование: Нижегородский государственный архитектурно-строительный университет, 1991 г., инженер.
Область научных интересов: анаэробные микроорганизмы; очистка сточных вод; анаэробно-биохимическая очистка; анаэробная переработка отходов животноводства; возобновляемые источники энергии.
Публикации: 134
Индекс Хирша: РИНЦ – 8; Scopus – 7
Scopus Author ID: 57191839730
603950, г. Нижний Новгород, ул. Ильинская, д. 65
А. А. Ковалев
Россия
Ковалев Андрей Александрович - главный научный сотрудник лаборатории биоэнергетических технологий, доктор технических наук.
Образование: Московский государственный университет путей сообщения (МИИТ), 2009 г., инженер.
Область научных интересов: возобновляемые источники энергии; анаэробная переработка отходов животноводства; производство биогаза из биомассы; теплоэнергетические установки; тепломассообмен.
Публикации: более 200
Индекс Хирша: РИНЦ – 18; Scopus – 18; Researchgate – 18
Researcher ID: F-7045-2017
Scopus Author ID: 57205285134
https://www.researchgate.net/profile/Andrey-Kovalev-8
109428, г. Москва, 1-й Институтский проезд, дом 5
+79263477955
Д. А. Ковалев
Россия
Ковалев Дмитрий Александрович - заведующий лабораторией биоэнергетических технологий, кандидат технических наук.
Образование: Московский государственный индустриальный университет (МГИУ), 2003 г., инженер.
Область научных интересов: возобновляемые источники энергии; анаэробная переработка отходов животноводства; технические инновации в сельском хозяйстве и защите окружающей среды; производство биогаза из биомассы.
Публикации: более 200
Индекс Хирша РИНЦ – 17; Scopus – 11; WoS – 8
Researcher ID: K-4810-2015
109428, г. Москва, 1-й Институтский проезд, дом 5
Е. А. Журавлева
Россия
Журавлева Елена Александровна - науч. сотр. лаборатории микробиологии антропогенных мест обитания, канд. биол. наук.
Образование: Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова, 2019 г., микробиолог.
Область научных интересов: анаэробные микроорганизмы; метаногенные сообщества микроорганизмов; метаногенез; органические отходы; очистка сточных вод; прямой межвидовой перенос электронов; синтрофия.
Публикации: более 30
Индекс Хирша: РИНЦ – 7; Scopus – 13; WoS – 12
Researcher ID: JBS-4297-2023
Scopus Author ID: 57216346570
119071, г. Москва, Ленинский проспект, д. 33, стр. 2
А. А. Лайкова
Россия
Лайкова Александра Алексеевна - младший научный сотрудник лаборатории микробиологии антропогенных мест обитания, аспирант.
Образование: Московский Государственный Университет имени М. В. Ломоносова, 2023 г., микробиолог.
Область научных интересов: биоводород; биогаз; биогитан; осадки сточных вод; анаэробная ферментация; биотехнология; анаэробная переработка отходов; водородпродуцирующие бактерии; метаногенное сообщество.
Публикации: более 15
Индекс Хирша: РИНЦ – 6; Scopus – 7; WoS – 7
Researcher ID: IVU-7977-2023
Scopus Author ID: 58044317600
119071, г. Москва, Ленинский проспект, д. 33, стр. 2
А. А. Иваненко
Россия
Иваненко Артем Александрович - инженер лаборатории микробиологии антропогенных мест обитания, магистр
Образование: Московский Государственный Университет имени М. В. Ломоносова, 2024 г., экология и природопользование.
Область научных интересов: биогаз; биоводород; анаэробная переработка отходов; биотехнология; метаногенные сообщества микроорганизмов.
Публикации: более 5
Индекс Хирша: Scopus – 3
Researcher ID: JAX-4154-2023
119071, г. Москва, Ленинский проспект, д. 33, стр. 2
119899, г. Москва, Ленинские Горы, д. 1, стр. 12
В. А. Панченко
Россия
Панченко Владимир Анатольевич - кандидат технических наук, доцент кафедры; старший научный сотрудник лаборатории
Образование: Московский государственный технический университет имени Н. Э. Баумана, 2009 г., инженер.
Область научных интересов: возобновляемая энергетика; трёхмерное моделирование; электротранспорт; циклическая экономика и устойчивое развитие.
Публикации: 300
Индекс Хирша: РИНЦ – 20; Scopus: – 7; WoS: – 10
Researcher ID: P-8127-2017
Scopus Author ID: 57201922860
Web of Science Researcher ID: AAE-1758-2019
127994, г. Москва, ул. Образцова, д. 9, стр. 9
109428, г. Москва, 1-й Институтский проезд, дом 5
Ю. В. Литти
Россия
Литти Юрий Владимирович - заведующий лабораторией микробиологии антропогенных мест обитания, кандидат биологических наук.
Образование: Российский химико-технологический университет им. Д. И. Менделеева (РХТУ), 2008 г., инженер.
Область научных интересов: анаэробные микроорганизмы; метаногенные сообщества микроорганизмов; метаногенез; твердые органические отходы; очистка сточных вод; нитрификация; денитрификация; процесс анаммокс;
анаммокс-бактерии.
Публикации: более 90
Индекс Хирша: РИНЦ – 20; Scopus – 21; WoS – 19
Researcher ID: C-4945-2014
Scopus Author ID: 55251689800
119071, г. Москва, Ленинский проспект, д. 33, стр. 2
Список литературы
1. . Vo T. -P., Lay C. -H., Lin C. -Y. Effects of Hydraulic Retention Time on Biohythane Production via Single-Stage Anaerobic Fermentation in a Two-Compartment Bioreactor // Bioresource Technology. 2019; 292:121869. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.biortech.2019.121869.
2. . Lay C. -H., Vo T. -P., Lin P. -Y., Abdul P. M., Liu C. -M., Lin C. -Y. Anaerobic Hydrogen and Methane Production from Low-Strength Beverage Waste-water // International Journal of Hydrogen Energy. 2019; 44 (28):14351-14361. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2019.03.165.
3. . Bolzonella D., Battista F., Cavinato C., Gottardo M., Micolucci F., Lyberatos G., Pavan P. Recent Developments in Biohythane Production from Household Food Wastes: A Review // Bioresource Technology. 2018; 257:311-319. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.02.092.
4. . Ghimire A., Kumar G., Sivagurunathan P., Shobana S., Saratale G. D., Kim H. W., Luongo V., Esposito G., Munoz R. Bio-Hythane Production from Microalgae Biomass: Key Challenges and Potential Opportunities for Algal Bio-Refineries // Bioresource Technology. 2017; 241:525-536. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.biortech.2017.05.156.
5. . Ta D. T., Lin C. -Y., Ta T. M. N., Chu C. -Y. Biohythane Production via Single-Stage Anaerobic Fermentation Using Entrapped Hydrogenic and Methanogenic Bacteria // Bioresource Technology. 2020; 300:122702. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.biortech.2019.122702.
6. . Liu Z., Zhang C., Lu Y., Wu X., Wang L., Wang L., Han B., Xing X. -H. States and Challenges for High-Value Biohythane Production from Waste Biomass by Dark Fermentation Technology // Bioresource Technology. 2013; 135:292-303. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.biortech.2012.10.027.
7. . Hans M., Kumar S. Biohythane Production in Two-Stage Anaerobic Digestion System // International Journal of Hydrogen Energy. 2019.
8. . Kumar G., Shobana S., Nagarajan D., Lee D. -J., Lee K. -S., Lin C. -Y. Chen C. -Y., Chang J. -S. Biomass Based Hydrogen Production by Dark Fermentation – Recent Trends and Opportunities for Greener Processes // Current Opinion in Biotechnology. 2018; 50:136-145. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.cop-bio.2017.12.024.
9. . Argun H., Kargi F. Bio-Hydrogen Production by Different Operational Modes of Dark and Photo-Fermentation: An Overview // International Journal of Hydrogen Energy. 2011; 36 (13):7443-7459. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2011.03.116.
10. . Massanet-Nicolau J., Dinsdale R., Guwy A., Shipley G. Utilising Biohydrogen to Increase Methane Production, Energy Yields and Process Efficiency via Two Stage Anaerobic Digestion of Grass // Bioresource Technology. 2015; 189:379-383. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.biortech.2015.03.116.
11. . Schievano A., Tenca A., Lonati S., Manzini E., Adani F. Can Two-Stage Instead of One-Stage Anaerobic Digestion Really Increase Energy Recovery from Biomass? //Applied Energy 2014; 124:335-342. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.apenergy.2014.03.024.
12. . Khanal S. K., Chen W. -H., Li L., Sung S. Biological Hydrogen Production: Effects of PH and Intermediate Products // International Journal of Hydrogen Energy. 2004; 29 (11):1123-1131. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2003.11.002.
13. . Fang H. H. P., Liu H. Effect of PH on Hydrogen Production from Glucose by a Mixed Culture // Bioresource Technology. 2002; 82 (1):87-93. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/S0960-8524(01)00110-9.
14. . Ward A. J., Hobbs P. J., Holliman P. J., Jones D. L. Optimisation of the Anaerobic Digestion of Agri cultural Resources // Bioresource Technology. 2008; 99 (17):7928-7940. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.biortech.2008.02.044.
15. . Wang J., Wan W. Factors Influencing Fermentative Hydrogen Production: A Review // International Journal of Hydrogen Energy. 2009; 34:799-811. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2008.11.015.
16. . Arslan C., Sattar A., Changying J., Nasir A., Ali Mari I., Zia Bakht M. Impact of PH Management Interval on Biohydrogen Production from Organic Fraction of Municipal Solid Wastes by Mesophilic Thermophilic Anaerobic Codigestion // BioMed Research International. 2015; 2015:590753. https://doi.org/10.1155/2015/590753. International Publishing House of scientific periodicals «Space»
17. . Wang B., Li Y., Wang D., Liu R., Wei Z., Ren N. Simultaneous Coproduction of Hydrogen and Methane from Sugary Wastewater by an “ACSTRH–UASB-Met” System // International Journal of Hydrogen Energy. 2013; 38 (19):7774-7779. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2013.04.065.
18. . Mamimin C., Singkhala A., Kongjan P., Suraraksa B., Prasertsan P., Imai T., O-Thong S. Two-Stage Thermophilic Fermentation and Mesophilic Methanogen Process for Biohythane Production from Palm Oil Mill Effluent // International Journal of Hydrogen Energy. 2015; 40 (19):6319-6328. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2015.03.068.
19. . Aashabharathi M., Kumar S. D., Shobana S., Karthigadevi G., Srinidhiy C. A., Subbaiya R., Karmegam N., Kim W., Govarthanan M. Biohythane Production Techniques and Recent Advances for Green Environment – A Comprehensive Review // Process Safety and Environmental Protection. 2024; 184:400-410. https://doi.org/10.1016/j.psep.2024.01.099.
20. . Seengenyoung J., Mamimin C., Prasertsan P., O-Thong S. Pilot-Scale of Biohythane Production from Palm Oil Mill Effluent by Two-Stage Thermophilic Anaerobic Fermentation // International Journal of Hydrogen Energy. 2019; 44 (6):3347-3355. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2018.08.021.
21. . Beal L. J., Raman D. R. Sequential Two-Stage Anaerobic Treatment of Confectionery Wastewater // Journal of Agricultural Engineering Research. 2000; 76 (2):211-217. https://doi.org/https://doi.org/10.1006/jaer.2000.0555.
22. . Mikheeva E. R., Katraeva I. V., Vorozhtsov D. L., Kovalev D. A., Kovalev A. A., Grigoriev V. S., Litti Y. V. Dark Fermentative Biohydrogen Production from Confectionery Wastewater in Continuous-Flow Reactors // International Journal of Hydrogen Energy. 2022; 47 (53):22348-22358.https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2022.05.131.
23. . Van Ginkel S. W., Oh S. -E., Logan B. E. Biohydrogen Gas Production from Food Processing and Domestic Wastewaters // International Journal of Hydrogen Energy. 2005; 30 (15):1535-1542. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2004.09.017.
24. . Dębowski M., Kisielewska M., Kazimierowicz J., Zieliński M. Methane Production from Confectionery Wastewater Treated in the Anaerobic Labyrinth-Flow Bioreactor // Energies. 2023; 16 (1). https://doi.org/10.3390/en16010571.
25. . Buitrón G., Kumar G., Martinez-Arce A., Moreno G. Hydrogen and Methane Production via a Two-Stage Processes (H2-SBR + CH4-UASB) Using Tequila Vinasses // International Journal of Hydrogen Energy. 2014; 39 (33):19249-19255.https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2014.04.139.
26. . Yang H., Si B., Huang S., Liu Z., Zhang Y. Effect of PH Control on Biohythane Production and Microbial Structure in an Innovative Multistage Anaerobic Hythane Reactor (MAHR) // International Journal of Hydrogen Energy. 2020; 45 (7):4193-4204. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2019.12.046.
27. . Mikheeva E. R., Katraeva I. V., Kovalev A. A., Kovalev D. A., Nozhevnikova A. N., Panchenko V., Fiore U., Litti Yu. V. The Start-Up of Continuous Biohydrogen Production from Cheese Whey: Comparison of Inoculum Pretreatment Methods and Reactors with Moving and Fixed Polyurethane Carriers // Applied Sciences. 2021; 11 (2). https://doi.org/10.3390/app11020510.
28. . Kovalev A. A., Mikheeva E. R., Katraeva I. V., Kovalev D. A., Kozlov A. M., Litti Yu. V. Bioenergy Recovery from Two-Stage Mesophilic-Thermophilic Anaerobic Digestion of Cheese Whey // International Journal of Hydrogen Energy. 2023; 48 (12):4676-4685. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2022.11.003.
29. . Meyer J., Rein P., Turner P., Mathias K., McGregor C. Good Management Practices Manual for the Cane Sugar Industry // The International Finance Corporation 2011; 1:696.
30. . Ndobeni A., Oyekola O., Welz P. J. Organic Removal Rates and Biogas Production of an Upflow Anaerobic Sludge Blanket Reactor Treating Sugarcane Molasses // South African Journal of Chemical Engineering. 2019; 28:1-7.https://doi.org/10.1016/j.sajce.2019.01.002.
31. . Khanal S. K., Tirta Nindhia T. G., Nitayavardhana S. Chapter 11 – Biogas from Wastes: Processes and Applications / Taherzadeh M. J., Bolton K., Wong J., Pandey A. B. T. -S. R. R. and Z. W. A., Eds. // Elsevier. – 2019, pp. 165-174. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-64200-4.00011-6.
32. . Labatut R. A., Pronto J. L. Chapter 4 – Sustainable Waste-to-Energy Technologies: Anaerobic Digestion / Trabold T. A., Babbitt C. W. B. T. -S. F. W. -T. S., Eds. // Academic Press. – 2018, pp. 47-67. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-811157-4.00004-8.
33. . Mikheeva E., Katraeva I., Vorozhtsov D., Litti Yu., Nozhevnikova A. Efficiency of Two-Phase Anaerobic Fermentation and the Physicochemical Properties of the Organic Fraction of Municipal Solid Waste Processed in a Vortex-Layer Apparatus // Applied Biochemistry and Microbiology. 2020; 56:736-742. https://doi.org/10.1134/S0003683820060113.
34. . Fadrosh D. W., Ma B., Gajer P., Sengamalay N., Ott S., Brotman R. M., Ravel J. An Improved Dual-Indexing Approach for Multiplexed 16S RRNA Gene Sequencing on the Illumina MiSeq Platform // Microbiome. 2014; 2 (1):6. https://doi.org/10.1186/2049-2618-2-6.
35. . W., H. L., A., W. H., Sverker L., E., J. H., Mathilda L., Sandra R., Lars E., F., A. A. DegePrime, a Program for Degenerate Primer Design for Broad-Taxonomic-Range PCR in Microbial Ecology Studies // Applied and Environmental Microbiology. 2014; 80 (16):5116-5123. https://doi.org/10.1128/AEM.01403-14.
36. . Merkel A. Y., Tarnovetskii I. Y., Podosokorskaya O. A., Toshchakov S. V. Analysis of 16S RRNA Primer Systems for Profiling of Thermophilic Microbial Communities // Microbiology. 2019; 88 (6):671-680. https://doi.org/10.1134/S0026261719060110.
37. . Kallistova A., Merkel A., Kanapatskiy T., Boltyanskaya Y., Tarnovetskii I., Perevalova A., Kevbrin V., Samylina O., Pimenov N. Methanogenesis in the Lake Elton Saline Aquatic System // Extremophiles. 2020; 24 (4):657-672. https://doi.org/10.1007/s00792-020-01185-x.
38. . Callahan B. J., McMurdie P. J., Rosen M. J., Han A. W., Johnson A. J. A., Holmes S. P. DADA2: High-Resolution Sample Inference from Illumina Amplicon Data // Nature Methods. 2016; 13 (7):581-583. https://doi.org/10.1038/nmeth.3869.
39. . Quast C., Pruesse E., Yilmaz P., Gerken J., Schweer T., Yarza P., Peplies J., Glöckner F. O. The SILVA Ribosomal RNA Gene Database Project: Improved Data Processing and Web-Based Tools // Nucleic Acids Research. 2013; 41 (D1): D590-D596. https://doi.org/10.1093/nar/gks1219.
40. . Laikova A. A., Kovalev A. A., Kovalev D. A., Zhuravleva E. A., Shekhurdina S. V., Litti Yu. V. The Feasibility of Single-Stage Biohythane Production in a Semi-Continuous Thermophilic Bioreactor: Influence of Operating Parameters on the Process Kinetics and Microbial Community Dynamics // International Journal of Hydrogen Energy. 2024; 55:1486-1494. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2023.12.140.
41. . Krishnan S., Singh L., Sakinah M., Thakur S., Wahid Z. A., Sohaili J. Effect of Organic Loading Rate on Hydrogen (H2) and Methane (CH4) Production in Two-Stage Fermentation under Thermophilic Conditions Using Palm Oil Mill Effluent (POME) // Energy for Sustainable Development. 2016; 34:130-138. https://doi.org/10.1016/j.esd.2016.07.002.
42. . Venetsaneas N., Antonopoulou G., Stamatelatou K., Kornaros M., Lyberatos G. Using Cheese Whey for Hydrogen and Methane Generation in a Two-Stage Continuous Process with Alternative PH Controlling Approaches // Bioresource Technology. 2009; 100 (15):3713-3717. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2009.01.025.
43. . Rangel C., Sastoque J., Calderon J., Mosquera J., Velasquez P., Cabezab I., Acevedo P. Hydrogen Production by Dark Fermentation Process: Effect of Initial Organic Load // Chemical Engineering Transactions. 2020; 79 (February):133-138. https://doi.org/10.3303/CET2079023.
44. . Kanchanasuta S., Pisutpaisal N. Improvement of Glycerol Waste Utilization by Co-Feedstock with Palm Oil Decanter Cake on Biohydrogen Fermentation // International Journal of Hydrogen Energy. 2017; 42 (5):3447-3453. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2016.12.134.
45. . Yun J., Cho K. -S. Effects of Organic Loading Rate on Hydrogen and Volatile Fatty Acid Production and Microbial Community during Acidogenic Hydrogenesis in a Continuous Stirred Tank Reactor Using Molasses Wastewater // Journal of Applied Microbiology. 2016; 121 (6):1627-1636. https://doi.org/10.1111/jam.13316.
46. . Nualsri C., Kongjan P., Reungsang A., Imai T. Effect of Biogas Sparging on the Performance of Bio-Hydrogen Reactor over a Long-Term Operation // PLOS ONE 2017; 12 (2):e0171248.
47. . Mari A. G., Andreani C. L., Tonello T. U., Leite L. C. C., Fernandes J. R., Lopes D. D., Rodrigues J. A. D., Gomes S. D. Biohydrogen and Biomethane Production from Cassava Wastewater in a Two-Stage Anaerobic Sequencing Batch Biofilm Reactor // International Journal of Hydrogen Energy. 2020; 45 (8):5165-5174. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2019.07.054.
48. . Nacheva P. M., Chávez G. M., Chacón J. M., Chuil A. C. Treatment of Cane Sugar Mill Wastewater in an Upflow Anaerobic Sludge Bed Reactor // Water Science and Technology. 2009; 60 (5):347-1352. https://doi.org/10.2166/wst.2009.402.
49. . Ferraz Júnior A. D. N., Etchebehere C., Zaiat M. High Organic Loading Rate on Thermophilic Hydrogen Production and Metagenomic Study at an Anaerobic Packed-Bed Reactor Treating a Residual Liquid Stream of a Brazilian Biorefinery // Bioresource Technology. 2015; 186:81-88. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2015.03.035.
50. . Thanikal J. V., Torrijos M., Habouzit F., Moletta R. Treatment of Distillery Vinasse in a High Rate Anaerobic Reactor Using Low Density Polyethylene Supports // Water Science and Technology. 2007; 56 (2): 17-24. https://doi.org/10.2166/wst.2007.467.
51. . Sosa-villalobos C., Rustrian E., Houbron E. Assessment of a Fixed Biomass Anaerobic Reactor for the Treatment of Vinasse // International Journal of Environmental Research. 2015; 9:1157-1162.
52. . Fan K. -S., Kan N., Lay J. Effect of Hydraulic Retention Time on Anaerobic Hydrogenesis in CSTR // Bioresource Technology. 2006; 97 (1):84-89.https://doi.org/10.1016/j.biortech.2005.02.014.
53. . Song W., Cheng J., Zhou J., Xie B., Su H., Cen K. Cogeneration of Hydrogen and Methane from Protein-Mixed Food Waste by Two-Phase Anaerobic Process // International Journal of Hydrogen Energy. 2010; 35 (7):3141-3146. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2009.09.102.
54. . Van Ginkel S. W., Logan B. Increased Biological Hydrogen Production with Reduced Organic Loading // Water Research. 2005; 39 (16):3819-3826.https://doi.org/10.1016/j.watres.2005.07.021.
55. . Hallenbeck P. C., Ghosh D. Advances in Fermentative Biohydrogen Production: The Way Forward? // Trends in Biotechnology. 2009; 27 (5):287-297. https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2009.02.004.
56. . Mamimin C., Prasertsan P., Kongjan P., O-Thong S. Effects of Volatile Fatty Acids in Biohydrogen Effluent on Biohythane Production from Palm Oil Mill Effluent under Thermophilic Condition // Electronic Journal of Biotechnology. 2017; 29:78-85. https://doi.org/10.1016/j.ejbt.2017.07.006.
57. . Hao P. Sequential Hydrogen and Methane Coproduction from Sugary Wastewater Treatment by “CST-RHyd-UASBMet” System // AIP Conference Proceedings. 2017; 1890 (1):40107. https://doi.org/10.1063/1.5005309.
58. . Wang X., Zhao Y. A Bench Scale Study of Fermentative Hydrogen and Methane Production from Food Waste in Integrated Two-Stage Process // International Journal of Hydrogen Energy. 2009; 34 (1):245-254. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2008.09.100.
59. . Alibardi L., Cossu R. Effects of Carbohydrate, Protein and Lipid Content of Organic Waste on Hydrogen Production and Fermentation Products // Waste Management. 2016; 47:69-77. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2015.07.049.
60. . Hernández M. A., González A. J., Suárez F., Ochoa C., Candela A. M., Cabeza I. Assessment of the Biohydrogen Production Potential of Different Organic Residues in Colombia: Cocoa Waste, Pig Manure and Coffee Mucilage // Chemical Engineering Transactions. 2018; 65:247-252. https://doi.org/10.3303/CET1865042.
61. . Pérez-Rangel M., Barboza-Corona J. E., Valdez-Vazquez I. Effect of the Organic Loading Rate and Temperature on Hydrogen Production via Consolidated Bioprocessing of Raw Lignocellulosic Substrate // International Journal of Hydrogen Energy. 2023; 48 (92):35907-35918. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2023.05.329.
62. . Provenzano M. R., Cavallo O., Malerba A. D., Fabbri C., Zaccone C. Unravelling (Maize Silage) Digestate Features throughout a Full-Scale Plant: A Spectroscopic and Thermal Approach // Journal of Cleaner Production. 2018; 193:372-378. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2018.05.081.
63. . Jobling Purser B. J., Thai S. -M., Fritz T., Esteves S. R., Dinsdale R. M., Guwy A. J. An Improved Titration Model Reducing over Estimation of Total Volatile Fatty Acids in Anaerobic Digestion of Energy Crop, Animal Slurry and Food Waste // Water Research. 2014; 61:162-170. https://doi.org/10.1016/j.watres.2014.05.020.
64. . Nkuna R., Roopnarain A., Rashama C., Adeleke R. Insights into Organic Loading Rates of Anaerobic Digestion for Biogas Production: A Review // Critical reviews in biotechnology. 2021; 42:1-21. https://doi.org/10.1080/07388551.2021.1942778.
65. . Mézes L., Biró G., Sulyok E., Petis M., Borbely J., Tamas J. Novel Approach of the Basis of FOS/TAC Method; 2011.
66. . Wan C., Li Y. Effectiveness of Microbial Pretreatment by Ceriporiopsis Subvermispora on Different Biomass Feedstocks // Bioresource Technology. 2011; 102 (16):7507-7512. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.biortech.2011.05.026.
67. . Allen E., Wall D. M., Herrmann C., Murphy J. D. Investigation of the Optimal Percentage of Green Seaweed That May Be Co-Digested with Dairy Slurry to Produce Gaseous Biofuel // Bioresource Technology. 2014; 170:436-444. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2014.08.005.
68. . Di Maria F., Sordi A., Cirulli G., Gigliotti G., Massaccesi L., Cucina M. Co-Treatment of Fruit and Vegetable Waste in Sludge Digesters. An Analysis of the Relationship among Bio-Methane Generation, Process Stability and Digestate Phytotoxicity // Waste Management. 2014; 34 (9):1603-1608. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2014.05.017.
69. . Scano E. A., Asquer C., Pistis A., Ortu L., Demontis V., Cocco D. Biogas from Anaerobic Digestion of Fruit and Vegetable Wastes: Experimental Results on Pilot-Scale and Preliminary Performance Evaluation of a Full-Scale Power Plant // Energy Conversion and Management. 2014; 77:22-30. https://doi.org/10.1016/j.enconman.2013.09.004.
70. . Izumi K., Okishio Y., Nagao N., Niwa C., Yamamoto S., Toda T. Effects of Particle Size on Anaerobic Digestion of Food Waste // International Biodeterioration & Biodegradation. 2010; 64 (7):601-608. https://doi.org/10.1016/j.ibiod.2010.06.013.
71. . Rajagopal R., Massé D. I., Singh G. A Critical Review on Inhibition of Anaerobic Digestion Process by Excess Ammonia // Bioresource Technology. 2013; 143:632-641. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2013.06.030.
72. . Park J. -G., Lee B., Jo S. -Y., Lee J. -S., Jun H. -B. Control of Accumulated Volatile Fatty Acids by Recycling Nitrified Effluent // Journal of Environmental Health Science and Engineering. 2018; 16 (1):19-25. https://doi.org/10.1007/s40201-018-0291-9.
73. . Wang Y., Zhang Y., Wang J., Meng L. Effects of Volatile Fatty Acid Concentrations on Methane Yield and Methanogenic Bacteria // Biomass and Bioenergy. 2009; 33 (5):848-853. https://doi.org/10.1016/j.biombioe.2009.01.007.
74. . Zuo Z., Wu S., Zhang W., Dong R. Effects of Organic Loading Rate and Effluent Recirculation on the Performance of Two-Stage Anaerobic Digestion of Vegetable Waste // Bioresource Technology. 2013; 146:556-561. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2013.07.128.
75. . Sarkar O., Venkata Mohan S. Deciphering Acidogenic Process towards Biohydrogen, Biohythane, and Short Chain Fatty Acids Production: Multi-Output Optimization Strategy // Biofuel Research Journal. 2016; 11:458-469. https://doi.org/10.18331/BRJ2016.3.3.5.
76. . Wu B., Zhang X., Bao D., Xu Y., Zhang S., Deng L. Biomethane Production System: Energetic Analysis of Various Scenarios // Bioresource Technology. 2016; 206:155-163. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2016.01.086.
77. . Li D., Yuan Z., Sun Y., Ma L., Li L. Sequential Anaerobic Fermentative Production of Hydrogen and Methane from Organic Fraction of Municipal Solid Waste*: Sequential Anaerobic Fermentative Production of Hydrogen and Methane from Organic Fraction of Municipal Solid Waste // Chinese Journal of Appplied Environmental Biology. 2010; 2009:250-257. https://doi.org/10.3724/SP.J.1145.2009.00250.
78. . Xiao B., Qin Y., Wu J., Chen H., Yu P., Liu J., Li Y. -Y. Comparison of Single-Stage and Two-Stage Thermophilic Anaerobic Digestion of Food Waste: Performance, Energy Balance and Reaction Process // Energy Conversion and Management. 2018; 156:215-223. https://doi.org/10.1016/j.enconman.2017.10.092.
79. . Schievano A., Tenca A., Scaglia B., Merlino G., Rizzi A., Daffonchio D., Oberti R., Adani F. Two-Stage vs Single-Stage Thermophilic Anaerobic Digestion: Comparison of Energy Production and Biodegradation Efficiencies // Environmental Science & Technology. 2012; 46 (15):8502-8510. https://doi.org/10.1021/es301376n.
80. . Kongjan P., O-Thong S., Angelidaki I. Hydrogen and Methane Production from Desugared Molasses Using a Two-Stage Thermophilic Anaerobic Process // Engineering in Life Sciences. 2013; 13 (2):118-125. https://doi.org/10.1002/elsc.201100191.
81. . Bundhoo M. A. Z., Mohee R., Hassan M. A. Effects of Pre-Treatment Technologies on Dark Fermentative Biohydrogen Production: A Review // Journal of Environmental Management. 2015; 157:20-48. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2015.04.006.
82. . Tanaka H., Doesburg K., Iwasaki T., Mierau I. Screening of Lactic Acid Bacteria for Bile Salt Hydrolase Activity // Journal of Dairy Science. 1999; 82 (12):2530-2535. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(99)75506-2.
83. . Detman A., Laubitz D., Chojnacka A., Kiela P. R., Salamon A., Barberán A., Chen Y., Yang F., Błaszczyk M. K., Sikora A. Dynamics of Dark Fermentation Microbial Communities in the Light of Lactate and Butyrate Production // Microbiome. 2021; 9 (1):158. https://doi.org/10.1186/s40168-021-01105-x.
84. . Tang T., Chen Y., Liu M., Du Y., Tan Y. Effect of PH on the Performance of Hydrogen Production by Dark Fermentation Coupled Denitrification // Environmental Research. 2022; 208:112663. https://doi.org/10.1016/j.envres.2021.112663.
85. . Lin Q., Dong X., Luo J., Zeng Q., Ma J., Wang Z., Chen G., Guo G. Electrochemical Pretreatment Enhancing Co-Fermentation of Waste Activated Sludge and Food Waste into Volatile Fatty Acids: Performance, Microbial Community Dynamics and Metabolism // Bioresource Technology. 2022; 361:127736. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2022.127736.
86. . Cardoso Ribeiro J., Mota V. T., Maia de Oliveira V., Dacanal G. C., Zaiat M. Hydrogen and Organic Acid Production from Dark Fermentation of Sugarcane Vinasse without Buffers in Mesophilic and Thermophilic Conditions // Journal of Chemical Technology & Biotechnology. 2021, n/a (n/a). https://doi.org/10.1002/jctb.7003.
87. . Cabrol L., Marone A., Tapia-Venegas E., Steyer J. -P., Ruiz-Filippi G., Trably E. Microbial Ecology of Fermentative Hydrogen Producing Bioprocesses: Useful Insights for Driving the Ecosystem Function // FEMS Microbiology Reviews. 2017; 41:158-181. https://doi.org/10.1093/femsre/fuw043.
88. . Li Z., Gu J., Ding J., Ren N., Xing D. Molecular Mechanism of Ethanol-H2 Co-Production Fermentation in Anaerobic Acidogenesis: Challenges and Perspectives // Biotechnology Advances. 2021; 46:107679. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2020.107679.
89. . Mugnai G., Borruso L., Mimmo T., Cesco S., Luongo V., Frunzo L., Fabbricino M., Pirozzi F., Cappitelli F., Villa F. Dynamics of Bacterial Communities and Substrate Conversion during Olive-Mill Waste Dark Fermentation: Prediction of the Metabolic Routes for Hydrogen Production // Bioresource Technology. 2021; 319:124157. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2020.124157.
90. . Niu C., Pan Y., Lu X., Wang S., Zhang Z., Zheng C., Tan Y., Zhen G., Zhao Y., Li Y. -Y. Mesophilic Anaerobic Digestion of Thermally Hydrolyzed Sludge in Anaerobic Membrane Bioreactor: Long-Term Performance, Microbial Community Dynamics and Membrane Fouling Mitigation // Journal of Membrane Science. 2020; 612:118264. https://doi.org/10.1016/j.memsci.2020.118264.
91. . Fu X., Jin X., Pan C., Ye R., Wang Q., Wang H., Lu W. Enhanced Butyrate Production by Transition Metal Particles during the Food Waste Fermentation // Bioresource Technology. 2019; 291:121848. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2019.121848.
92. . Litti Yu. V., Potekhina M. A., Zhuravleva E. A., Vishnyakova A. V., Gruzdev D. S., Kovalev A. A., Kovalev D. A., Katraeva I. V., Parshina S. N. Dark Fermentative Hydrogen Production from Simple Sugars and Various Wastewaters by a Newly Isolated Thermoanaerobacterium Thermosaccharolyticum SP-H2 // International Journal of Hydrogen Energy. 2022; 47 (58):24310-24327. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2022.05.235.
93. . Bundhoo M. A. Z., Mohee R. Inhibition of Dark Fermentative Bio-Hydrogen Production: A Review // International Journal of Hydrogen Energy. 2016; 41 (16):6713-6733. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2016.03.057.
94. . Dauptain K., Trably E., Santa-Catalina G., Bernet N., Carrere H. Role of Indigenous Bacteria in Dark Fermentation of Organic Substrates // Bioresource Technology. 2020; 313:123665. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2020.123665.
95. . Kovalev A. A., Kovalev D. A., Karaeva J. V., Vivekanand V., Pareek N., Masakapalli S. K., Osmonov O. M., Zhuravleva E. A., Laikova A. A., Shekhurdina S. V., Litti Yu. V. Innovative Organic Waste Pretreatment Approach for Efficient Anaerobic Bioconversion: Effect of Recirculation Ratio at Pre-Processing in Vortex Layer Apparatus on Biogas Production // International Journal of Hydrogen Energy. 2024; 53:208-217.https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2023.12.044.
96. . Zhang L., Loh K. -C., Sarvanantharajah S., Tong Y. W., Wang C. -H., Dai Y. Mesophilic and Thermophilic Anaerobic Digestion of Soybean Curd Residue for Methane Production: Characterizing Bacterial and Methanogen Communities and Their Correlations with Organic Loading Rate and Operating Temperature // Bioresource Technology. 2019; 288:121597. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2019.121597.
97. . Wasserfallen A., Nölling J., Pfister P., Reeve J. N., Macario E. Phylogenetic Analysis of 18 Thermophilic Methanobacterium Isolates Supports the Proposals to Create a New Genus, Methanothermobacter Gen. Nov., and to Reclassify Several Isolates in Three Species, Methanothermobacter Thermautotrophicus Comb. Nov., Methanothermobacter Wolfeii Comb. Nov., and Methanothermobacter Marburgensis Sp. Nov. // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2000; 50 Pt 1:43-53. https://doi.org/10.1099/00207713-50-1-43.
98. . Hao L., Lü F., Mazéas L., Desmond-Le Quéméner E., Madigou C., Guenne A., Shao L., Bouchez T., He P. Stable Isotope Probing of Acetate Fed Anaerobic Batch Incubations Shows a Partial Resistance of Acetoclastic Methanogenesis Catalyzed by Methanosarcina to Sudden Increase of Ammonia Level // Water Research. 2015; 69:90-99. https://doi.org/10.1016/j.watres.2014.11.010.
99. . Qin S., Wainaina S., Liu H., Soufiani A. M., Pandey A., Zhang Z., Awasthi M. K., Taherzadeh M. J. Microbial Dynamics during Anaerobic Digestion of Sewage Sludge Combined with Food Waste at High Organic Loading Rates in Immersed Membrane Bioreactors // Fuel. 2021; 303:121276. https://doi.org/10.1016/j.fuel.2021.121276.
100. . Hebecker S., Lorenzo C., Hoffmann S., Walther J., Storbeck S., Piekarski T., Tindall B., Wray V., Nimtz M., Moser J. Adaptation of Pseudomona Aeruginosa to Various Conditions Includes TRNA-Dependent Formation of Alanyl-Phosphatidylglycerol // Molecular microbiology. 2009; 71:551-565. https://doi.org/10.1111/j.1365-2958.2008.06562.x.
101. . Buettner C., Von Bergen M., Jehmlich N., Noll M. Pseudomonas Spp. Are Key Players in Agricultural Biogas Substrate Degradation // Scientific Reports. 2019; 9. https://doi.org/10.1038/s41598-019-49313-8.
102. . Li C., He P., Hao L., Lü F., Shao L., Zhang H. Diverse Acetate-Oxidizing Syntrophs Contributing to Biogas Production from Food Waste in Full-Scale Anaerobic Digesters in China // Renewable Energy. 2022; 193:240-250. https://doi.org/10.1016/j.renene.2022.04.143.
103. . Mahdy A., Bi S., Song Y., Qiao W., Dong R. Overcome Inhibition of Anaerobic Digestion of Chicken Manure under Ammonia-Stressed Condition by Lowering the Organic Loading Rate // Bioresource Technology Reports. 2020; 9:100359. https://doi.org/10.1016/j.biteb.2019.100359.
104. . Qian D. -K., Geng Z. -Q., Sun T., Dai K., Zhang W., Jianxiong Zeng R., Zhang F. Caproate Production from Xylose by Mesophilic Mixed Culture Fermentation // Bioresource Technology. 2020; 308:123318. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2020.123318.
105. . Liu Y., Qiao J. -T., Yuan X. -Z., Guo R. -B., Qiu Y. -L. Hydrogenispora Ethanolica Gen. Nov., Sp Nov., an Anaerobic Carbohydrate-Fermenting Bacterium from Anaerobic Sludge // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2014; 64. https://doi.org/10.1099/ijs.0.060186-0.
106. . de Leeuw K., de Smit S., van Oossanen S., Moerland M., Buisman C., Strik D. Methanol-Based Chain Elongation with Acetate to n-Butyrate and Isobutyrate at Varying Selectivities Dependent on PH. ACS Sustainable Chemistry & Engineering 2020, XXXX. https://doi.org/10.1021/acssuschemeng.0c00907.
107. . Collins M. D., Lawson P. A., Willems A., Cordoba J. J., Fernandez-Garayzabal J., Garcia P., Cai J., Hippe H., Farrow J. A. E. The Phylogeny of the Genus Clostridium: Proposal of Five New Genera and Eleven New Species Combinations // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 1994; 44 (4):812-826. https://doi.org/https://doi.org/10.1099/00207713-44-4-812.
108. . Ao T., Li R., Chen Y., Li C., Li Z., Liu X., Ran Y., Li D. Anaerobic Thermophilic Digestion of Maotai-Flavored Distiller’s Grains: Process Performance and Microbial Community Dynamics // Energy & Fuels. 2019; 33. https://doi.org/10.1021/acs.energyfuels.9b02582.
109. . Jiang M., Qiao W., Wang Y., Zou T., Lin M., Dong R. Balancing Acidogenesis and Methanogenesis Metabolism in Thermophilic Anaerobic Digestion of Food Waste under a High Loading Rate // Science of The Total Environment. 2022; 824:153867. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2022.153867.
110. . Gagliano M. C., Braguglia C., Petruccioli M., Rossetti S. Ecology and Biotechnological Potential of the Thermophilic Fermentative Coprothermobacter Spp // FEMS Microbiology Ecology. 2015; 91. https://doi.org/10.1093/femsec/fiv018.
111. . Li B. -Y., Xia Z. -Y., Gou M., Sun Z. -Y., Huang Y. -L., Jiao S. -B., Dai W. -Y., Tang Y. -Q. Production of Volatile Fatty Acid from Fruit Waste by Anaerobic Digestion at High Organic Loading Rates: Performance and Microbial Community Characteristics // Bioresource Technology. 2022; 346:126648.https://doi.org/10.1016/j.biortech.2021.126648.
112. . Lee J., Koo T., Yulisa A., Hwang S. Magnetite as an Enhancer in Methanogenic Degradation of Volatile Fatty Acids under Ammonia-Stressed Condition // Journal of Environmental Management. 2019; 241:418-426.https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2019.04.038.
113. . Greses S., Tomás-Pejó E., González-Fernández C. Food Waste Valorization into Bioenergy and Bioproducts through a Cascade Combination of Bioprocesses Using Anaerobic Open Mixed Cultures // Journal of Cleaner Production. 2022; 372:133680. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2022.133680.
114. . Cai C., Li L., Hua Y., Liu H., Dai X. Ferroferric Oxide Promotes Metabolism in Anaerolineae Other than Microbial Syntrophy in Anaerobic Methanogenesis of Antibiotic Fermentation Residue // Science of The Total Environment. 2021; 758:143601. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2020.143601.
115. . Zhang X., Jiao P., Wang Y., Wu P., Li Y., Ma L. Enhancing Methane Production in Anaerobic Co-Digestion of Sewage Sludge and Food Waste by Regulating Organic Loading Rate // Bioresource Technology. 2022; 363:127988. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2022.127988.
116. . Carballa M., Regueiro L., Lema J. M. Microbial Management of Anaerobic Digestion: Exploiting the Microbiome-Functionality Nexus // Current Opinion in Biotechnology. 2015; 33:103-111. https://doi.org/10.1016/j.copbio.2015.01.008.
117. . Li M. -T., Rao L., Wang L., Gou M., Sun Z. -Y., Xia Z. -Y., Song W. -F., Tang Y. -Q. Bioaugmentation with Syntrophic Volatile Fatty Acids-Oxidizing Consortia to Alleviate the Ammonia Inhibition in Continuously Anaerobic Digestion of Municipal Sludge // Chemosphere. 2022; 288:132389. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2021.132389.
118. . Kuroda K., Shinshima F., Tokunaga S., Noguchi T. Q. P., Yamauchi M., Nobu M. K., Narihiro T., Yamada M. Assessing the Effect of Green Tuff as a Novel Natural Inorganic Carrier on Methane-Producing Activity of an Anaerobic Sludge Microbiome // Environmental Technology & Innovation. 2021; 24:101835. https://doi.org/10.1016/j.eti.2021.101835.
119. . Treu L., Tsapekos P., Peprah M., Campanaro S., Giacomini A., Corich V., Kougias P. G., Angelidaki I. Microbial Profiling during Anaerobic Digestion of Cheese Whey in Reactors Operated at Different Conditions // Bioresource Technology. 2019; 275:375-385. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.12.084.
120. . Contreras-Dávila C. A., Carrión V. J., Vonk V. R., Buisman C. N. J., Strik D. P. B. T. B. Consecutive Lactate Formation and Chain Elongation to Reduce Exogenous Chemicals Input in Repeated-Batch Food Waste Fermentation // Water Research. 2020; 169:115215. https://doi.org/10.1016/j.watres.2019.115215.
121. . Liu B., Kleinsteuber S., Centler F., Harms H., Sträuber H. Competition Between Butyrate Fermenters and Chain-Elongating Bacteria Limits the Efficiency of Medium-Chain Carboxylate Production // Frontiers in Microbiology. 2020; 11. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.00336.
122. . Ordoñez-Frías E. J., Muñoz-Páez K. M., Buitrón G. Biohydrogen Production from Fermented Acidic Cheese Whey Using Lactate: Reactor Performance and Microbial Ecology Analysis // International Journal of Hydrogen Energy. 2024; 52:389-403. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2023.06.307.
123. . [123] García-Depraect O., Muñoz R., Rodríguez E., Rene E. R., León-Becerril E. Microbial Ecology of a Lactate-Driven Dark Fermentation Process Producing Hydrogen under Carbohydrate-Limiting Conditions // International Journal of Hydrogen Energy. 2021; 46 (20):11284-11296. https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2020.08.209.
124. . Braga Nan L., Trably E., Santa-Catalina G., Bernet N., Delgenes J. -P., Escudie R. Microbial Community Redundance in Biomethanation Systems Lead to Faster Recovery of Methane Production Rates after Starvation // Science of The Total Environment. 2022; 804: 150073. https://doi.org/10.1016/j.scito-tenv.2021.150073.
125. . Yang S., Luo F., Yan J., Zhang T., Xian Z., Huang W., Zhang H., Cao Y., Huang L. Biogas Production of Food Waste with In-Situ Sulfide Control under High Organic Loading in Two-Stage Anaerobic Digestion Process: Strategy and Response of Microbial Community // Bioresource Technology. 2023; 373:128712.https://doi.org/10.1016/j.biortech.2023.128712.
Рецензия
Для цитирования:
Михеева Э.Р., Шехурдина С.В., Катраева И.В., Ковалев А.А., Ковалев Д.А., Журавлева Е.А., Лайкова А.А., Иваненко А.А., Панченко В.А., Литти Ю.В. Оптимизация непрерывного двухстадийного производства биогитана из сточных вод кондитерской промышленности. Альтернативная энергетика и экология (ISJAEE). 2025;(6):29-62. https://doi.org/10.15518/isjaee.2025.06.029-062
For citation:
Mikheeva E.R., Shekhurdina S.V., Katraeva I.V., Kovalev A.A., Kovalev D.A., Zhuravleva E.A., Laikova A.A., Ivanenko A.A., Panchenko V.A., Litti Yu.V. Optimization of continuous two-stage production of biogitan from wastewater of the confectionery industry. Alternative Energy and Ecology (ISJAEE). 2025;(6):29-62. (In Russ.) https://doi.org/10.15518/isjaee.2025.06.029-062